д.м.н., профессор, заведующий кафедрой патологической физиологии и клинической лабораторной диагностики
Dr. Sci. (Med.), Professor, Head of the Department of Pathological Physiology and Clinical Laboratory Diagnostics, Irkutsk State Medical University, Russia, 664003, Irkutsk, st. Krasnogo Vosstaniya, 1. ORCID: 0000-0002-5982-3875
к.м.н., доцент кафедры патологической физиологии и клинической лабораторной диагностики
Cand. Sci. (Med.), Associate Professor, Department of Pathological Physiology and Clinical Laboratory Diagnostics, Irkutsk State Medical University, Russia, 664003, Irkutsk, st. Krasnogo Vosstaniya, 1. ORCID:0000-0003-3328-4727
д.м.н., доцент, профессор кафедры генетики ФГБОУ ВО ИГМУ Минздрава России, Россия, 664003, г. Иркутск, ул. Красного Восстания, 1; старший научный сотрудник ФГБНУ «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека», Россия, 664003, г. Иркутск, ул. Тимирязева, 16; ведущий научный сотрудник ФГБНУ «Восточно-Сибирский институт медико-экологических исследований», Россия, 665826, г. Ангарск, микрорайон 12а, дом 3
Dr. Sci. (Med.), Associate Professor, Professor of the Department of Pathological Physiology and Clinical Laboratory Diagnostics, Irkutsk State Medical University, Russia, 664003, Irkutsk, st. Krasnogo Vosstaniya, 1; Senior Researcher, «Scientific Center for Family Health and Human Reproduction Problems», Russia, 664003, Irkutsk, Timiryazeva St., 16; Leading Researcher, «East Siberian Institute of Medical and Ecological Research», Russia, 665826, Angarsk, microdistrict 12a, building 3. ORCID: 0000-0001-7525-2657
д.м.н., профессор
Dr. Sci. (Med.), Professor, Irkutsk State Medical Academy of Postgraduate Education - branch of the Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Professional Education, Russian Medical Academy of Postgraduate Education, Russia, 664049, Irkutsk, microdistrict. Yubileiny, 100
Актуальность. Препарат Омник (Тамсулозин) снижает тонус гладкой мускулатуры предстательной железы, шейки мочевого пузыря, простатической части уретры, улучшает отток мочи, уменьшает симптомы обструкции и раздражения мочевыводящих путей при ДГП. Однако данные о его противовоспалительном действии противоречивы и неконкретны.
Цель. Определить механизмы противовоспалительного действия препарата Омник на модели гнойного воспаления у крыс.
Материал и методы. Исследование проведено на 50 беспородных белых крысах-самцах, распределенных на 2 серии: 1 серия – контрольная (им имплантировали под кожу бедра диффузионные камеры, заполненные водной взвесью однодневной культуры staphylococcus aureus; 2 серия – опытная (животным этой серии моделировалось гнойное воспаление аналогично контролю, но с 1 суток воспаления крысам в/м вводили 0,02 мл препарата Омник в течение 10 дней). Забор материалы проводили через 2, 3, 5, 7, 10, 15, 20, 30, 60 суток после имплантации. Материал фиксировали в 10-процентном растворе нейтрального формалина. Морфометрическими методами оценивали интенсивность воспалительной реакции вокруг камеры. В периферической зоне очага воспаления качественно оценивали состояние микрососудов, подсчитывали концентрацию тучных клеток, эозинофилов, нейтрофилов, мононуклеаров и малодифференцированных фибробластов в 1000 мкм2.
Результаты. В опытной группе, получавшей препарат Омник, через 48 часов после начала воспаления вокруг стен-ки камер наблюдается клеточный вал толщиной 313,18 ± 30,19 мкм. Через 3 суток после введения камер толщина лейкоцитарного вала сохраняется и составляет 334,38 ± 25,69 мкм. Через 5 суток после начала воспаления толщи-на лейкоцитарного вала резко уменьшается по сравнению с предыдущим сроком и составляет 157,86 ± 46,08 мкм. Через 7 суток после введения камер толщина клеточного вала увеличивается до 220 ± 29,67 мкм. На 10-е сутки от начала воспаления происходит уменьшение толщины вала до 129,52 ± 21,01 мкм. На 15-е сутки воспаления толщина и состояние лейкоцитарного вала не меняются. На 20–30–60-е сутки с момента имплантации камер вокруг них наблюдались остатки лейкоцитарного вала толщиной 117,86 ± 29,6 мкм.
Заключение. Влияние препарата Омник на динамику клеточных реакций в очаге воспаления усиливает миграционные способности лейкоцитов, концентрирует фибробласты вокруг лейкоцитарного вала. При этом синтез фибробластами коллагена не соответствует толщине соединительнотканной капсулы, что нарушает процесс созревания капсулы. Предположительно действия препарата Омник связано с влиянием препарата на тонус капилляров и венул.
Relevance. The effect of the drug Omnic (Tamsulosin) reduces the tone of the smooth muscles of the prostate gland, bladder neck, prostatic part of the urethra, improves urine flow, reduces the symptoms of obstruction and irritation of the urinary tract in benign prostatic hypertrophy. However, there are no data on its anti-inflammatory effect.
Objective. To determine the mechanisms of the anti-inflammatory effect of the drug Omnic on the model of purulent inflammation in rats.
Material and methods. The study was conducted on 50 outbred white male rats divided into 2 series: Series 1 - control (they were implanted with diffusion chambers filled with an aqueous suspension of a one-day culture of staphylococcus aureus under the skin of the thigh; Series 2 - experimental (the animals of this series were modeled with purulent inflammation similar to the control, but from the 1st day of inflammation, the rats were injected intramuscularly with 0.02 ml of the Omnic preparation for 10 days). The materials were collected 2, 3, 5, 7, 10, 15, 20, 30, 60 days after implantation. The material was fixed in a 10 % solution of neutral formalin. In the peripheral zone of the inflammation focus, the state of the microvessels was qualitatively assessed, the concentration of mast cells, eosinophils, neutrophils, mononuclear cells and poorly differentiated fibroblasts was counted.
Results. After 48 Hours after the onset of inflammation, a cellular wall with a thickness of 313.18 ± 30.19 μm is observed around the chamber wall. Three days after the introduction of the chambers, the thickness of the leukocyte wall remains the same and is 334.38 ± 25.69 μm. Five days after the onset of inflammation, the thickness of the leukocyte wall decreases sharply compared to the previous period and is 157.86 ± 46.08 μm. Seven days after the introduction of the chambers, the thickness of the cellular wall increases to 220 ± 29.67 μm. On the 10th day from the onset of inflammation, the thickness of the wall decreases to 129.52 ± 21.01 μm. On the 15th day of inflammation, the thickness and condition of the leukocyte wall do not change. On days 20-30-60 from the moment of implantation of the chambers, the remains of the leukocyte shaft with a thickness of 117.86 ± 29.6 μm were observed around them.
Conclusion. The effect of Omnic on the dynamics of cellular reactions in the inflammation focus enhances the migration capacity of leukocytes, concentrates fibroblasts around the leukocyte shaft. At the same time, the synthesis of collagen by fibroblasts does not correspond to the thickness of the connective tissue capsule, which disrupts the maturation process of the capsule. Presumably, the action of Omnic is associated with the effect of the drug on the tone of capillaries and venules
Актуальность исследования
По данным ряда авторов препарат Омник (Тамсулозин) снижает тонус гладкой мускулатуры предстательной железы, шейки мочевого пузыря, простатической части уретры, улучшает отток мочи, уменьшает симптомы обструкции и раздражения мочевыводящих путей при ДГП [1,2,3]. Это достигается за счет селективной блокады постсинаптических a1А-адренорецепторов гладкой мускулатуры предстательной железы, шейки мочевого пузыря и простатической части уретры [4,5,6]. Способность блокировать a1А-АР в 20 раз больше по сравнению с действием на a1B-АР гладкой мускулатуры сосудов. [7,8,9].
В доступной литературе мы не нашли конкретных данных о влиянии препарата Омник на стадии воспалительного процесса, хотя клинические наблюдения свидетельствуют о снижении симптомов воспаления у больных, принимающих этот препарат. В связи с вышеизложенным в настоящем исследовании была поставлена цель – на модели гнойного воспаления у крыс определить механизмы противовоспалительного действия препарата Омник.
Материалы и методы исследования
Исследование проведено на 50 беспородных белых крысах-самцах массой 180-220 г. в осенне-зимний период. Содержание животных и постановка экспериментов проводилась в соответствии с требованиями приказов № 1179 МЗ СССР от 11.10.1983 года и № 267 МЗ РФ от 19.06.2003 года, а также международных правил «Guide for the Careand Use of Laboratory Animals» и соответствовали «Правилам проведения работ с использованием экспериментальных животных», «Контролю за проведением работ с использованием экспериментальных животных» (приказ №742 и №48 Министерства высшего и среднего специального образования СССР от 13.11.1984г. и от 23.01.1985г.) и «Европейской конвенции о защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях» (Страсбург, 18.03.1986г.) Животные содержались в условиях вивария, эксперимент проводился в соответствии с правилами гуманного обращения с животными, которые регламентированы «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных» (Приложение к приказу Министерства здравоохранения СССР от 12.08.1977 г. № 755). Все оперативные вмешательства проводились в асептических условиях.
Крыс распределили на 2 серии:
1 серия – контрольная. Животным под легким эфирным наркозом для моделирования гнойного воспаления имплантировали под кожу бедра диффузионные камеры собственной конструкции (патент № 5030684(010989) от 4.03.92), заполненные водной взвесью однодневной культуры staphylococcus aureus № 9198 в дозе 100 тыс. микробных тел на 1 камеру.
2 серия – опытная. Животным этой серии моделировалось гнойное воспаление аналогично контролю. С 1 суток воспаления крысам в/м вводили 0,02 мл препарата Омник в течение 10 дней. Доза препарата рассчитывалась как среднетерапевтическая: каждой крысе массой 180 - 220г вводили Омник в дозе, равной 0,012 мг, что соответствовало 0,02 мл раствора данного препарата.
Забор кусочков ткани с камерами проводили через 2, 3, 5, 7, 10, 15, 20, 30, 60 суток после имплантации. Материал фиксировали в 10-процентном растворе нейтрального формалина, подвергали стандартной гистологической обработке, кусочки заливали в парафин, срезы толщиной 7 мкм окрашивали гематоксилин-эозином и по Ван-Гизону.
В очаге воспаления вокруг камер на светооптическом уровне по разработанной методике (Семинский И.Ж., Клейн К.Л., Дедюх А.В., 1991 г.) морфологически оценивали динамику клеточных реакций. Количественно регистрировали толщину лейкоцитарного вала вокруг стенки камеры, концентрацию клеток в вале, соотношение клеточных популяций, толщину фибробластической капсулы вокруг лейкоцитарного вала, число слоев фибробластов, концентрацию фибробластов в капсуле (рис. 1).
Рис. 1. Метод оценки клеточных реакций в очаге воспаления
В периферической зоне очага воспаления качественно оценивали состояние микрососудов, подсчитывали концентрацию тучных клеток, эозинофилов, нейтрофилов, мононуклеаров и малодифференцированных фибробластов.
На 2 и 15 сутки после начала воспаления определяли фагоцитарный индекс, фагоцитарное число лейкоцитов, находящихся внутри камеры. Для этого дно камеры вскрывалось, изготовлялся мазок, который фиксировали смесью Никифорова, высушивали на воздухе и окрашивали по методу Романовского-Гимза. Цифровые данные обработаны стандартными методами вариационной статистики и считались достоверными при р ≤ 0,05.
Результаты собственных исследований
Динамика воспалительного процесса у контрольных животных
Через 48 ч после повреждения толщина клеточного вала вокруг камеры составляет 118,2 ± 18 мкм, происходит массовая гибель нейтрофилов в вале, которая сопровождается фагоцитированием их макрофагами (рис. 2, 3, 4).
Рис. 2. Динамика толщины лейкоцитарного вала вокруг камеры
Рис. 3. Динамика плотности лейкоцитов в очаге воспаления
Рис.4. Лейкоцитарный вал вокруг стенки камеры у контрольных (А) и опытных (Б) животных. 48ч от начала воспаления
Соотношение нейтрофил: макрофаг = 1 : 1. Состояние фагоцитоза лейкоцитов: ФЧ = 4,59 ± 0,3 микробных тел; ФИ = 49 ± 3% (рис. 5, 6).
Рис. 5. Динамика фагоцитарного индекса лейкоцитов внутри камеры
Рис. 6. Динамика фагоцитарного числа лейкоцитов внутри камеры
В отдаленной зоне на этот срок концентрация лейкоцитов составляет на 8 ± 1,1 на 1000 мкм2, 50% представлено нейтрофилами, 50% - мононуклеарами. Наблюдается расширение и полнокровие сосудов, начинают появляться малодифференцированные фибробласты (рис.7).
Рис.7. Отдаленная зона очага воспаления у опытных животных. 48ч от начала воспаления
Через 3 суток после введения камеры непосредственно около ее стенки продолжается накопление лейкоцитов, плотность которых составляет 11,2 ± 2,2 на 1000 мкм2, толщина клеточного вала 241,2 ± 16 мкм, в нем преобладают моноциты и макрофаги – 75%, 25% - нейтрофилы. Продолжается интенсивный аутолиз нейтрофилов и фагоцитоз их фрагментов макрофагами. По периферии лейкоцитарного вала появляется тонкая фибробластическая капсула, состоящая из 1-2 параллельно ориентированных слоев клеток (рис. 8, 9).
Рис. 8. Динамика толщины фибробластической капсулы вокруг камеры
Рис.9. Лейкоцитарный вал и формирующаяся фибробластическая капсула вокруг стенки камеры у контрольных (А) и опытных (Б) животных. 3 сутки от начала воспаления
В отдаленной зоне часть микрососудов запустевает, регистрируется небольшое количество моноцитов и лимфоцитов, плотность которых составляет 6,4 ± 1,8 на 1000 мкм2. Наблюдается миграция в очаг воспаления малодифференцированных фибробластов, плотность которых на этот срок составляет 3,3 ± 0,6 на 1000 мкм2 (рис 10).
Рис. 10. Динамика плотности фибробластов в очаге воспаления
Через 5 суток после начала воспалительного процесса толщина лейкоцитарного вала с плотностью клеток 23,1 ± 2,8 на 1000 мкм2 снижается и составляет 100,1 ± 14 мкм. В вале соотношение мононуклеар : нейтрофил = 9 : 1. Макрофаги активно фагоцитируют нейтрофильный детрит. Вокруг лейкоцитарного вала формируется фибробластическая капсула, состоящая из 3-4 слоев параллельно ориентированных фибробластов, толщиной 46,1 ± 3,2 мкм. Между фибробластами находятся макрофаги, имеются слабые признаки синтеза коллагена. Периферическая зона очага воспаления соответствует предыдущему сроку (рис. 11).
Рис. 11. Динамика рядов фибробластов вокруг камеры
Через 7 суток после введения камер к их стенке прилежит клеточный инфильтрат, толщина которого составляет 107,2 ± 19 мкм, плотность клеток 22,2 ± 5,2 на 1000 мкм2. Наблюдается обновление состава инфильтрата за счет нейтрофилов, соотношение нейтрофил : макрофаг = 1 : 1. Толщина фибробластической капсулы вокруг вала составляет 68,9 ± 7,2 мкм, число параллельно ориентированных слоев фибробластов составляет 6,3 ± 1,2, имеется незначительное количество вновь синтезированного коллагена.
В отдаленной зоне количество расширенных микрососудов увеличивается по сравнению с предыдущим сроком, плотность лейкоцитов составляет 4,5 ± 1,2 на 1000 мкм2, плотность малодифференцированных фибробластов – 5,1 ± 0,8 на 1000 мкм2.
На 10 сутки от начала воспаления толщина лейкоцитарного вала вокруг камеры увеличивается и составляет 227,2 ± 16 мкм, качественный состав инфильтрата соответствует предыдущему сроку. Фибробластическая капсула вокруг лейкоцитарного вала толщиной 100,1 ± 18,2 мкм, состоит из 12,4 ± 1,6 числа слоев фибробластов. Она незначительно уплотняется по сравнению с предыдущим сроком, хотя остается рыхлой. Количество коллагена не соответствует числу фибробластов, между нитями коллагена продолжают сохраняться лейкоциты и макрофаги. Морфологическая картина отдаленной зоны по сравнению с предыдущим сроком не изменилась.
Через 15 суток от начала воспаления состояние клеточного вала вокруг камер практически не изменилось. Показатели фагоцитоза лейкоцитов составили: ФЧ = 6,1 ± 1,1 микробных тел; ФИ = 72 ± 4%. Фибробластическая капсула сохранила прежнюю толщину, число слоев фибробластов – 11,1 ± 3,2, нити коллагена лежат рыхло.
В отдаленной зоне продолжает регистрироваться незначительное полнокровие сосудов, плотность лейкоцитов – 3,1 ± 0,7 на 1000 мкм2, плотность малодифференцированных фибробластов - 5,3 ± 0,7 на 1000 мкм2.
Через 20 суток после введения камер вокруг них наблюдается следующая картина: сохраняется клеточный инфильтрат толщиной 167,5 ± 46,18 мкм с плотностью клеток 11,62 ± 0,51 на 1000 мкм2, соотношение нейтрофил : мононуклеар = 1 : 3. Макрофаги активно фагоцитируют аутолизированные нейтрофилы. Вокруг клеточного вала сформировалась рыхлая фибробластическая капсула толщиной 252,08 ± 46,21 мкм, число слоев фибробластов – 5,6 ± 0,74. Фибробласты недостаточно интенсивно синтезируют коллаген, часть его фагоцитируется макрофагами. В периферической зоне очага воспаления увеличивается плотность фибробластов – 2,2 ± 0,45 на 1000 мкм2, и уменьшается плотность лейкоцитов.
Через 30-60 суток после начала воспаления в очаге вокруг камер наблюдается следующая картина: толщина лейкоцитарного вала значительно снижается до 112,18 ± 22,22 мкм, в нем преобладают макрофаги, соотношение нейтрофил : макрофаг = 1 : 9. Толщина фибробластической капсулы увеличивается до 365,34 ± 54,71 мкм, число слоев фибробластов 6,48 ± 0,96, продолжается синтез коллагена. Соединительная ткань капсулы созревает, уплотняется, в ней значительно уменьшается содержание лейкоцитов (рис. 12). Периферическая зона очага воспаления соответствует норме.
Рис.12. Фибробластическая капсула вокруг стенки камеры у контрольных (А) и опытных (Б) животных. 60 сутки от начала воспаления
Динамика воспалительного процесса у опытных животных
Через 48ч после начала воспаления вокруг стенки камер наблюдается клеточный вал толщиной 313,18 ± 30,19 мкм с плотностью лейкоцитов 23,76 ± 2,22 на 1000 мкм2 . Соотношение нейтрофил : макрофаг = 2 : 1. Лейкоциты активно фагоцитируют стафилококк, фагоцитарное число (ФЧ) = 3,97 ± 0,7 микробных тел, фагоцитарный индекс (ФИ) = 60 ± 7,07%.
В отдаленной зоне на этот срок концентрация лейкоцитов составляет на 10,7 ± 2,6 на 1000 мкм2, соотношение нейтрофил : мононуклеар = 1 : 1, появляются отдельные малодифференцированные фибробласты. Большинство микрососудов полнокровно и расширено.
Через 3 суток после введения камер толщина лейкоцитарного вала сохраняется и составляет 334,38 ± 25,69 мкм, плотность клеток 21,34 ± 1,88 на 1000 мкм2, соотношение нейтрофил : макрофаг = 1 : 1. Лейкоциты интенсивно захватывают стафилококк, наблюдаются фигуры незавершенного фагоцитоза, происходит массовая гибель нейтрофилов в вале. По периферии лейкоцитарного инфильтрата появляются 3-4 слоя параллельно ориентированных фибробластов.
В периферической зоне очага воспаления микрососуды остаются расширенными, регистрируется небольшое количество дегранулированных тучных клеток и эозинофилов. Плотность мононуклеаров и нейтрофилов на 9,4 ± 1,8 на 1000 мкм2. Повышается концентрация малодифференцированных фибробластов, которая составляет 3,15 ± 0,78 на 1000 мкм2.
Через 5 суток после начала воспаления толщина лейкоцитарного вала резко уменьшается по сравнению с предыдущим сроком и составляет 157,86 ± 46,08 мкм. Большинство нейтрофилов находятся в стадии аутолиза и дегрануляции, макрофаги активно фагоцитируют нейтрофильный детрит. Соотношение нейтрофил: макрофаг = 1:3. Вокруг лейкоцитарного вала формируется фибробластическая капсула толщиной 170,5 ± 52,11 мкм, число слоев фибробластов 4,08 ± 1,59, признаков синтеза коллагена не наблюдается.
В отдаленной зоне состояние микрососудов соответствует предыдущему сроку. Наблюдается миграция в очаг воспаления лейкоцитов, плотность которых равна 7,9 ± 2,2 на 1000 мкм2, соотношение нейтрофил : мононуклеар = 1 : 1, увеличивается концентрация малодифференцированных фибробластов до 5,5 ± 0,9 на 1000 мкм2.
Через 7 суток после введения камер толщина клеточного вала увеличивается до 220 ± 29,67 мкм, плотность лейкоцитов в вале 17,92 ± 1,82 на 1000 мкм2, соотношение нейтрофил: макрофаг = 1 : 3, продолжается фагоцитоз аутолизированных нейтрофилов и стафилококка. Увеличивается толщина фибробластической капсулы до 314,17 ± 44,88 мкм, число слоев фибробластов составляет 8,25 ± 0,54. Фибробласты слабо ориентированы в параллельные ряды, между ними регистрируется небольшое количество вновь синтезированного коллагена, имеются макрофаги, лимфоциты и нейтрофилы. Состояние отдаленной зоны соответствует предыдущему сроку, однако, увеличивается концентрация малодифференцированных фибробластов до 7,2 ± 2 на 1000 мкм2.
На 10 сутки от начала воспаления происходит уменьшение толщины вала до 129,52 ± 21,01 мкм, плотность клеток в вале составляет 15,3 ± 1,15 на 1000 мкм2, преобладают макрофаги, которые активно фагоцитируют. Соотношение нейтрофил : макрофаг = 1 : 5. Соединительнотканная капсула вокруг вала уплотняется, толщина ее равна 321,57 ± 39,72 мкм, число слоев фибробластов 8,71 ± 2,41. Увеличивается синтез коллагена, хотя его количества недостаточно для надежной изоляции очага воспаления от здоровых тканей. Состояние периферической зоны очага воспаления, по сравнению с предыдущим сроком, не изменилось.
На 15 сутки воспаления толщина и состояние лейкоцитарного вала не меняются. Состояние фагоцитоза соответствует следующим показателям: ФЧ = 2,82 ± 0,42 микробных тел, ФИ = 19 ± 1%. Продолжается созревание фибробластической капсулы, толщина ее равна 284,35 ± 49,06 мкм, число слоев фибробластов 6,99 ± 1,57. Увеличивается количество фибрилл коллагена.
В отдаленной зоне регистрируется незначительное увеличение диаметра микрососудов, имеется небольшое число малодифференцированных фибробластов, концентрация которых составляет на 5,1 ± 0,7 на 1000 мкм2.
На 20-30-60 сутки с момента имплантации камер вокруг них наблюдается следующая картина: непосредственно вокруг стенок камер сохраняются остатки лейкоцитарного вала толщиной 117,86 ± 29,6 мкм, плотность лейкоцитов составляет 12,01 ± 1,89 на 1000 мкм2. В инфильтрате преобладают макрофаги, соотношение нейтрофил : макрофаг = 1 : 9. Вокруг лейкоцитарного вала образуется фибробластическая капсула толщиной 334,07 ± 100,4 мкм, число слоев фибробластов 7,83 ± 2,3. Фибробласты интенсивно синтезируют коллаген, однако, между пучками коллагена наблюдаются макрофаги, капсула остается рыхлой. Отдаленная зона очага воспаления практически соответствует норме, хотя часть микрососудов полнокровна и расширена. Около сосудов имеются единичные малодифференцированные фибробласты.
Заключение
Через 48 ч от начала воспаления у контрольных животных происходит миграция лейкоцитов из микрососудов в очаг повреждения, они накапливаются вокруг стенки камеры. Толщина лейкоцитарного вала через 2 суток составляет 118,2 ± 18 мкм, через 3 суток достигает максимума – 241,2 ± 16 мкм. Под влиянием препарата Омник процесс миграции лейкоцитов усиливается, через 2 суток толщина лейкоцитарного вала составляет 313,18 ± 30,19 мкм, через 3 суток – 334,38 ± 25,69 мкм. Затем происходят закономерные колебания толщины лейкоцитарного вала, достоверных отличий между контролем и опытом не наблюдается.
Интенсивность фагоцитоза по показателям фагоцитарного числа и фагоцитарного индекса у животных, получавших препарат Омник, не имеет достоверных различий по сравнению с контрольными.
Начиная с 3 – 5 суток от начала воспаления, у контрольных животных вокруг лейкоцитарного вала формируется фибробластическая капсула, толщина которой постепенно увеличивается и к 30 суткам достигает 279,17 ± 35,56 мкм, число слоев фибробластов в ней 5,6 ± 0,87. У животных, получавших препарат Омник, толщина фибробластической капсулы на протяжении всего эксперимента достоверно выше, чем в контроле. К 30 суткам она составляет 340,83 ± 137, 31 мкм, число слоев фибробластов в ней 8,545 ± 2,54.
Влияние препарата Омник на динамику клеточных реакций в очаге воспаления заключается в следующем:
По нашему мнению, точкой приложения действия препарата Омник является стенка микрососудов в очаге воспаления, которая становится более проницаемой для клеток на ранних стадиях процесса. Предположительно, механизм этого феномена может быть связан с влиянием препарата на тонус капилляров и венул. Данные литературы косвенно подтверждают наше мнение, т.к. известно, что альфа-адреноблокаторы могут вызывать расширение микрососудов кожи, увеличение межэндотелиальных щелей и другие реакции, приводящие к более интенсивной миграции лейкоцитов в зону воспаления [10-15].
The authors declare that there are no conflicts of interest present.